BLESS：利用生物素标签对DSBs进行原位标记，后经PCR扩增实现对于生物素标记片段的富集，并通过二代测序实现脱靶位点检测。直接检测细胞中的切割位点，灵敏度与细胞、组织密切相关。LAM-HTGTS，片段化的gDNA经过LAM-PCR引入接头，然后进行全基因组易位测序。高通量的全基因组范围检测，可准确检测DSBs引发的重排。GUIDE-Seq，将dsODN    s标签整合到DSBs位点，通过二代测序检测这些标签所在的基因组区域，从而确定脱靶突变的位置。广使用的细胞内检测方法。能检测低频脱靶突变。Digenome-Seq，片段化的gDNA与CRISPR/RNP混合孵育，进行全基因组测序检测脱靶。全基因组测序，直接检测切割位点，能检测低频脱靶突变。脱靶检测政策，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。基因疗法脱靶检测分析

Cas9蛋白是一种切割外来DNA的酶，像一把分子剪刀。该蛋白通常与两个RNA分子结合：crRNA和另一个称为tracrRNA（或“反式jihuocrRNA”）。这两个RNA分子引导Cas9到它将进行切割的目标部位。这段DNA是与crRNA的20个核苷酸互补的。CRISPR技术是从细菌和古细菌的自然防御机制中改编而来的。这些生物体使用CRISPR衍生的RNA和各种Cas蛋白，包括Cas9，来阻止病毒和其他异物的攻击。它们主要通过切碎和破坏外来入侵者的DNA来做到这一点。当这些组件被转移到其他更复杂的生物体中时，它允许对基因进行操纵，或“编辑”。广州基因编辑脱靶检测安评预算允许的情况下，通过全基因组测序的方法进行全基因组序列的分析和比对更精细，如基于NGS的iGUIDE方法。

但是由于CHIP-seq实验本身的难度较高，DISCOVER-seq这类方法的接受度并不高。3. 其他特殊方法CRISPR技术经过这么多年的发展，其应用已经不局限于造成DNA双链断裂，一些不要切割DNA双链的CRISPR衍生技术（如碱基编辑、先导编辑和CRISPRi/a），可以在不引发随机突变的情况下，对基因组进行精细编辑或者调控。这些技术所使用nCas9或dCas9只结合或者切割双链中的一条链，之前的脱靶检测方法都不能直接适用。这些CRISPR衍生技术中，CRISPR产生的脱靶可以被细分为两个部分，其一是Cas9/sgRNA结合DNA导致的脱靶，这部分信息使用同样序列的sgRNA进行野生型Cas9脱靶位点检测能够间接得到

采用基因编辑技术制备的细胞产品。对于采用基因编辑技术制备的基因修饰细胞产品，应进行体外在靶和脱靶活性评估，以确认修饰酶或向导RNA对靶基因序列的特异性。在评估基因编辑的脱靶风险时，应说明所选择的评价策略的合理性和敏感性。虽然采用计算机分析预测基因编辑的潜在脱靶位点，并对潜在脱靶位点进行深度测序分析，可用于评估基因编辑的脱靶风险；但选择的评价策略仍应包含体外全基因组测序比对，以证明潜在脱靶位点未出现脱靶。此外，在评估脱靶活性时，还应评估种属特异性的差异、细胞病理生理状态的差异或细胞类型的差异对非临床数据预测性的影响。必要时，还应分析基因编辑对细胞表型和生理功能的潜在影响。脱靶检测guide-sequence，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。

细胞经基因修饰后会改变其生物学特性，同时也会带来新的安全性风险，如基因编辑脱靶风险、载体插入突变风险、载体重组风险、表达的转基因产物的风险等。细胞经基因修饰后会改变其生物学特性，同时也会带来新的安全性风险，如基因编辑脱靶风险、载体插入突变风险、载体重组风险、表达的转基因产物的风险等。基于基因修饰细胞的产品种类繁多、各有特点，除上述一般技术要求外，还应基于产品的性进行相应的特殊考虑。本指导原则列举了以下三种情形的特殊考虑。种子基因脱靶检测，推荐唯可生物，实验实力强，专业性高，检测效率高，结果准确率高。台州crispr/cas9脱靶检测分析

检测脱靶效应比较好的方法:CIRCLE-seq。基因疗法脱靶检测分析

细胞外检测方法：细胞外检测方法较为直接，将基因组提纯后进行CRISPR体外切割实验，再捕获发生脱靶切割的位点即可。1) Digenome-seqDigenome-seq是较早提出的一类细胞外脱靶位点检测方法，提纯的基因组DNA被Cas9/sgRNA切割后，再经过标准的全基因组测序流程获得测序数据，之后需要较为复杂的生物信息学分析才能够获得CRISPR切割位点的信息。总体来讲，这种方法测序成本较高，并且检测灵敏度也有限。2)SITE-seq为了有效检测到低频脱靶位点，一般需要在建库时定向捕获CRISPR切割位点。SITE-seq就是这样一种测序方法，提纯的基因组DNA经过Cas9/sgRNA切割后，在切割位点末端连接带Biotin的接头；再随机打断基因组，在另一端连接第二个接头；经过链霉亲和素磁珠纯化，只有一轮被Cas9切割的DNA才能够被纯化并测序，实现了CRISPR切割位点的富集。该方法虽然提高了脱靶位点的检测灵敏度，但有着较高的实验要求，每次需要投入大量的基因组DNA，并且无法区分提纯基因组DNA时发生的随机断裂和Cas9的切割，导致产出较为明显的背景信号。同时，由于一轮Biotin接头只会接在Cas9切割位点的一侧，导致测序结果里只能看到脱靶位点一侧的序列。基因疗法脱靶检测分析