n掺杂可以明显影响碳点(CDs)的发射和激发特性，使双光子碳点(TP-CDs)具有本征双光子激发特性和605nm红光发射特性。在638nm激光的照射下，除了长波激发和发射外，还能产生活性氧，这为光动力技术提供了极大的可能性。更重要的是，各种表征和理论模拟证实了掺杂诱导的N杂环在TP-CDs与RNA的亲和力中起着关键作用。这种亲和力不仅可以实现核仁特异性的自我靶向，还可以通过ROS断裂RNA链来解离TP-CDs@RNA复合物，从而在治疗过程中产生荧光变化。TP-CDs结合了ROS产生的能力、PDT过程中的荧光变化、长波激发和发射特性以及核仁特异性自靶向性，因此可以认为是一种实时处理核仁动态变化的智能CDs。双光子显微镜已成为较厚有生命体生物组织三维成像中不可或缺的工具。美国ultima2PPLUS双光子显微镜分辨率

与普通显微镜相比，电子显微镜可以在更小的尺度上观察事物，冷冻电子显微镜可以观察活性生物大分子。双光子显微镜有什么优势？它能做普通光学显微镜做不到的事情吗？原来双光子显微镜可以准确穿透厚标本进行定点和***观察！因为电磁波的波长越短，粒子越强，散射的影响越大。双光子显微镜将激发光源改为长波长激光，增加了激光的穿透力，同时降低了对细胞的毒性。此外，由于双光子激发效应只能发生在物镜的焦点处，因此扫描精度极高，还可以提高激发光效率，减少扫描点以外的荧光物质的消耗。双光子显微镜光子跃迁双光子显微镜成像技术及不同转基因小鼠开展对多种脏器的成像研究。

使用双光子显微镜可以以亚细胞分辨率对钙离子传感器和谷氨酸传感器成像，从而测量不透明大脑深处的活动；成像膜电压变化能直接反映神经元活动，但神经元活动的速度对于常规的2PM来说太快。目前电压成像主要通过宽场显微镜实现，但它的空间分辨率较差并且只是于浅层深度。因此要在不透明的大脑中以高空间分辨率对膜电压变化进行成像，需要较提高2PM的成像速率。FACED模块输出处的子脉冲序列可以看作从虚拟光源阵列发出的光，这些子脉冲在中继到显微镜物镜后形成了一个空间上分离且时间延迟的焦点阵列。然后将该模块并入具有高速数据采集系统的标准双光子荧光显微镜中，如图2所示。光源是具有1MHz重复频率的920nm的激光器，通过FACED模块可产生80个脉冲焦点，其脉冲时间间隔为2ns。这些焦点是虚拟源的图像，虚拟源越远，物镜处的光束尺寸越大，焦点越小。光束沿y轴比x轴能更好地充满物镜，从而导致x轴的横向分辨率为0.82μm，y轴的横向分辨率为0.35μm。

通过并行化不同激光波长的激光扫描，研究人员增加了在相同时间内可以成像的体积，同时保持了高的时间和空间分辨率。研究人员通过引入两种不同波长的钙信号荧光探针，将神经元群体的活动标记为两种不同的颜色，同时激发两种不同波长的探针，从而实现了两种颜色的并行数据记录。为了实现三维空间成像，研究人员还在两个激光束上配置了快速变焦系统，即一个电透镜和一个空间光调制器。因此，可以以10Hz的速度同时记录10个500微米和500微米的平面，覆盖600微米的深度，覆盖大脑皮层第二层到第五层的结构，体积内可以记录2000多个神经元。双光子显微镜大量运营在实验室当中；

随着技术的发展，双光子显微镜的性能得到不断地优化，结合它的特点，大致可以分成深和活两个方面的提升。要想让激发激光进入更深的层面，大致可从两个方面入手，装置优化与标本改造。关于装置优化，我们可以把激光束变得更细，使能量更加集中，就能让激光穿透更深。关于标本，其中影响光传播的主要是物质吸收和散射，解决这个问题，我们需要对样本进行透明化处理。一种方法是运用某种物质将标本浸泡，使其中的物质（主要是脂质）被破坏或溶解。另一种方法是运用电泳将脂质电解，让标本的“透明度”提高。双光子显微镜可精确穿透较厚标本进行定点、有生命体的观察！国内荧光激光双光子显微镜商家

双光子显微镜能够进行光裂解、光转染和光损伤等光学操纵。美国ultima2PPLUS双光子显微镜分辨率

配合了双光子激发技术，激光共聚扫描显微镜则能更好得发挥功效。那么什么是双光子激发技术呢？在高光子密度的情况下，荧光分子可以同时吸收2个长波长的光子使电子跃迁到较高能级，经过一个很短的时间后，电子再跃迁回低能级同时放出一个波长为长波长一半的光子（P=h/λ）。利用这个原理，便诞生了双光子激发技术。双光子显微镜使用长波长脉冲激光，通过物镜汇聚，由于双光子激发需要很高的光子密度，而物镜焦点处的光子密度是比较高的，所以只有在焦点处才能发生双光子激发，产生荧光，该点产生的荧光再穿过物镜，被光探头接收，从而达到逐点扫描的效果。美国ultima2PPLUS双光子显微镜分辨率