细胞爬片免疫组化检测实验步骤
1、选择贴壁良好的细胞爬片,用4%多聚甲醛固定后15min后自然晾干。
2、PBS洗3次,每次5min。3、切片放入3%过氧化氢溶液,室温下孵育10min,以阻断内源性过氧化物酶。
4、PBS洗3次,每次5min,甩干后5%BSA封闭20min(封闭电荷)。
5、去除BSA液,每张切片加入50μl稀释的一抗覆盖组织,4℃过夜。
6、PBS洗3次,每次5min。
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7、去除PBS液,每张切片加50μl-100μl相应种属的二抗,4℃孵育50min。
8、PBS洗3次,每次5min。
9、去除PBS液,每张切片加50-100μl新鲜配制DAB溶液,显微镜控制显色。
10、显色完全后,蒸馏水或自来水冲洗,苏木素复染,1%盐酸酒精分化(1s),自来水冲洗,氨水返蓝,流水冲洗。
11、切片经过梯度酒精(70-100%)10min一个梯度,脱水干燥,二甲苯透明,中性树胶封固。 免疫组化实验原理,操作步骤尽在英瀚斯实验外包。细胞免疫组化
免疫组化实验所用的抗体
免疫组化实验中常用的抗体为单克隆抗体和多克隆抗体。单克隆抗体是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体,应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后,从动物血中所获得的免疫血清,是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。
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免疫组化常用的染色方法
根据标记物的不同分为免疫荧光法,免疫酶标法,亲和组织化学法,后者是以一种物质对某种组织成分具有高度亲合力为基础的检测方法。这种方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗体)在细胞或亚细胞水平的定位,其中生物素—抗生物素染色法常用。 安徽小鼠免疫组化注意事项免疫组化protocol,详情请看英瀚斯生物官网。
免疫组化的发展路程?在临床病理诊断中,免疫组织化学(IHC)是一种很重要的技术和手段,从20世纪70年代开始,免疫组化技术就应用于病理诊断,对于诊断cancer、cancer分类、判断预后产生了巨大的影响,同时也扩展了人们对于各种疾病及cancer形成过程的认识,提高了病理诊断与研究水平。但是,随着免疫组化的广泛应用,发现免疫组化技术存在一些局限性。深入研究免疫组化原理和技术,必须熟悉各种抗体真阳性反应部位,实现实验室间免疫组化标准化,使免疫组化在病理诊断中发挥比较大的辅助作用。如果您有免疫组化相关的实验,可以与我们英瀚斯生物进行联系。
免疫组化中IHC vs ICC的区别。英瀚斯生物为您说明。除了生物学来源,IHC和ICC在样品处理的程度上也有所不同。ICC需要透化,要么通过固定过程,要么是单独的透化步骤,这样抗体才能与细胞内的靶点相结合。而IHC可能不要单独的透化步骤,这取决于切片的厚度和固定方法。包埋在石蜡中的IHC切片必须进一步处理,才能进行抗体染色。一旦处理好样品,IHC和ICC的染色操作就几乎没什么差异了。当然,就染色而言,根据所使用的抗体来优化还是少不了的。免疫组化结果怎么看?
免疫组化的显色系统
免疫组化的显色系统是将抗原-抗体反应转化为可见信号的关键步骤。常用的免疫组化显色系统有DAB(3,3'-二氨基联苯胺)和AEC(3-氨基-9-乙基咔唑)。DAB显色产生棕色沉淀,适用于光学显微镜观察。AEC显色产生红色沉淀,适用于光学显微镜观察,但不适合长期保存。此外,还有荧光显色系统,如FITC(异硫氰酸荧光素)和TRITC(四甲基罗丹明异硫氰酸酯),适用于荧光显微镜观察。选择合适的显色系统需要考虑实验目的和检测设备。 关于免疫组化的常见问题汇总。山东做得好的免疫组化检测
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免疫组化在什么情况下进行组织抗原修复,抗原修复的条件是什么?
(1)由于组织中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定过程中,发生了蛋白之间交联及醛基的封闭作用,从而失去抗原性。通过抗原修复,使得细胞内抗原决定族重新暴露,提高抗原检测率。
(2)修复方法从强到弱一般分为三种,高压修复、微波修复、胰酶修复。修复液也分为若干种(具体的可以查阅相关资料,大量的:中性的、高pH的等)。
(3)微波修复,我们一般用6min*4次,效果不错。
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